Fermentabilidad y observación al microscopio óptico

El día 11 de febrero hicimos dos sesiones la segunda fue: Introducción a la Biotecnología: Fpermeabilidad con levaduras de distintos azucares y observación al microscopio de microorganismos, en la facultad de ciencias.

Empezamos el taller en el laboratorio donde nos explicaron que era la fermentación y que cada azúcar tiene una capacidad de fermentación distinta por lo que unas producen más CO₂ que otras durante la fermentación. El objetivo de la practica era determinar que azúcares tenían más capacidad de fermentación. Para ello mezclamos cada azúcar con la misma solución fermentadora y la misma suspensión de levadura, y metimos la mezcla en un sacarímetro de Einhor. No nos dio tiempo a ver los resultados por lo que no sabemos cual de los cuatro azúcares (glucosa, manosa, galactosa, sacarosa)  tiene más capacidad de fermentación.

Solución fermentadora

Sacarímetros de Einhor preparados

Después de dejar nuestros sacarímetros preparados, pasamos a ver con el microscopio. Cada grupo pudo observar distintas cosas como bacterias, mohos y algas. Fue uno de los momentos más entretenidos de la charla, sobre todo, cuando uno de los ponentes de la charla nos enseñó un pequeño ser microscópico.

Algas verdes vistas al microscopio

Tejido de la patata visto al microscopio

Ángela mirando con el microscópico


MICROORGANISMO VIVO (haz clic aquí)

Ha sido muy entretenida y educativa, supieron captar muy bien nuestra atención y conseguir que nos interesáramos mucho por ambas prácticas. Gracias a la Facultad de Ciencias de Burgos.

Introducción a la Biotecnología: ADN y PCR

El día 18 de febrero fuimos a la Facultad de Ciencias, para realizar una práctica sobre la extracción de ADN y la identificación de especies.
Fuimos a los laboratorios de biotecnología y ciencia de los alimentos. Primero nos dieron una breve introducción sobre el ADN y el PCR (reacción en cada de la polimerasa). Al empezar la práctica a cada grupo le asignaron diferentes muestras de vegetales (coco,colza,girasol,etc) y otro tubo con hojas de colza para extraer su ADN. Después añadimos CTAB en el tubo con las hojas de colza con una micropipeta e incubamos las muestras a una temperatura de 65ºC unos 30 minutos. Mientras tanto añadimos en un gel de agarosa la muestra de cada vegetal y esperamos para poder ver el resultado en el equipo transiluminador (electroforesis).

Resultado de la electroforesis.

Cogimos las muestras que habían sido sometidas a calor y las centrifugamos durante 10 minutos, se formaron dos fases y con una micropipeta recogimos la fase superior. Sobre esa fase añadimos cloroformo y lo sometimos de nuevo a una centrifugación, nuevamente se formaron dos fases, en la acuosa se quedo el ADN, el cual recogimos con una micropipeta, añadimos etanol muy frío, formándose así un precipitado de ADN (un pequeño hilo blanco) y centrifugamos por última vez obteniendo así una muestra de ADN que se queda pegada a la pared del tubo por último sacamos con la micropipeta el etanol del tubo.

ADN pegado a la pared del tubo.

Pinchando las muestras en los pocillos.

Compuestos bioactivos y aplicaciones biotecnológicas 1

El dia 10 de febrero fuimos a la Facultad de Ciencias a hacer un taller sobre compuestos bioactivos y aplicaciones biotecnológicas. Al comienzo del taller nos dieron una charla sobre estos compuestos, las aplicaciones en diferentes industrias, etc... Lo necesario para entender la siguiente parte de este taller.

A continuación nos llevaron a los laboratorios de biotecnología y ciencia de los alimentos. Empezamos la práctica preparando tres extractos diferentes: extracto de remolacha, extracto metanólico de hollejo y extracto acuoso de hollejo. Después hicimos la determinación del contenido de polifenoles totales mediante el reactivo de Folin- Ciocalteu y aplicando 10 mL de una solución de carbonato sódico. Medimos la absorbancia frente a un blanco y obtendremos la concentración de polifenoles totales.

A continuación determinamos la capacidad antioxidante por el método ABTS que consiste simplemente en echar un poco de nuestro extracto y de reactivo ABTS para medir la absorbancia final.

 Algunos compañeros preparando
 los diferentes extractos.

Tubos de ensayo con los seis extractos + el blanco

A continuación, incubamos las muestras, es decir, en cinco ependorf diferentes y numerados cada uno, echamos en cada uno de ellos lo que nos pone en el informe. Finalmente agitamos bien los ependorf y les congelamos a -20 º C y lo dejamos 24 h.

Los cinco ependorf con sus respectivos reactivos

Ha sido una practica que nos ha ayudado a descubrir muchas cosas, como por ejemplo, que el hollejo acuoso contiene muchisima mas cantidad de polifenoles que la remolacha.